TIPOS DE VEDAÇÃO E CONCENTRAÇÕES DE SACAROSE NO CULTIVO in vitro DE Tectona grandis L.f.

Authors

  • Dayane Ávila Fernandes Universidade Federal de Mato Grosso (UFMT), Cuiabá - MT
  • Patrícia Helena de Azevedo Universidade Federal de Mato Grosso (UFMT), Cuiabá - MT
  • Reginaldo Brito da Costa Universidade Federal de Mato Grosso (UFMT), Cuiabá - MT
  • Gilvano Ebling Brondani Universidade Federal de Mato Grosso (UFMT), Cuiabá - MT

DOI:

https://doi.org/10.37856/bja.v88i3.114

Abstract

O presente estudo objetivou testar concentrações de sacarose e tipos de vedação dos frascos no cultivo in vitro de teca (Tectona grandis L.f.). O delineamento experimental foi inteiramente casualizado em esquema fatorial (2x6), sendo dois tipos de vedação (tampa com filtro e tampa sem filtro) e seis concentrações de sacarose (0, 6, 12, 18, 24 e 30 mg.L-1), totalizando doze tratamentos com dez repetições. Os explantes foram cultivados em meio de cultura MS e mantidos por 35 dias em sala de crescimento com temperatura de 30 ± 2 ºC e fotoperíodo de 16 h. As seguintes variáveis foram determinadas: comprimento de broto (cm), número de entrenós e matéria seca dos brotos (mg). Os melhores resultados foram obtidos com o uso da tampa com filtro. Para cada variável, a melhor concentração de sacarose foi diferente. Na concentração de 17 mg.L-1 de sacarose, os brotos apresentaram 4,1 cm de comprimento. Na concentração de 18 mg.L-1, o número de entrenós, foi de 4,6 e para a matéria seca, a melhor concentração foi 30 mg.L-1, com média de 0,0162 mg. Os melhores resultados foram obtidos com 18 mg.L-1 de sacarose e a tampa plástica com filtro.

References

AKRAM, M.; AFTAB, F. 2009. An efficient method for clonal propagation and in vitro establishment of softwood shoots from epicormic buds of teak (Tectona grandis L.). Forestry Studies in China, Beijing, v.11, n.2, p.105-110,

BAILEY, J.D.; HARJANTO, N.A. 2005. Teak (Tectona grandis L.) tree growth, stem quality and health in coppiced plantations in Java, Indonesia. New Forests, Dordrecht, v.30, n.1, p.55-65

BANDEIRA, J.M.; LIMA, C.S.M.; RUBIN, S.; RIBEIRO, M.V.; FALQUETO, A.R.; PETERS, J.A.; BRAGA, E.J.B. 2007. Diferentes tipos de vedação dos frascos e concentrações de sacarose na micropropagação de Thymus vulgaris L. Revista Brasileira de Biociências, Porto Alegre, v.5, supl.2, p.472-474

BRONDANI, G.E.; WIT ONDAS, H.W.; BACCARIN, F.J.B.; GONÇALVES, A.N.; ALMEIDA, M. 2012. Micropropagation of Eucalyptus benthamii to form a clonal micro-garden. In Vitro Cellular & Developmental Biology - Plant, Columbia, v.48, n.5, p.478-487

CALVETE, E.O.; KÄMPF, A.N.; SUZIN, M. 2002. Concentração de sacarose no enraizamento in vitro de morangueiro. Horticultura Brasileira, Brasília, v.20, n.2, p.186-191

CONCEIÇÃO, F.X.; DRESCHER, R; PELISSARI, A.L.; LANSSANOVA, L.R.; FAVALESSA, C.M.C; ROQUETTE, J.G. 2012. Capacidade produtiva local de Tectona grandis em Monte Dourado, Estado do Pará, Brasil. Ciência Rural, Santa Maria, v.42, n.5, p.822-827

DAVIES, P.J. 2004. The plant hormones: their nature, occurrence and function. In: DAVIES, P.J. (Ed.). Plant hormones: biosynthesis, signal transduction, action! 3rd ed. Dordrecht: Kluwer Academic Publishers, p.1-15

DIÉ, A.; KITIN, P.; KOUAMÉ, F.N.G.; BULCKE, J.V.; ACKER, J.V.; BEECKMAN, H. 2012. Fluctuations of cambial activity in relation to precipitation result in annual rings and intra-annual growth zones of xylem and phloem in teak (Tectona grandis) in Ivory Coast. Annals of Botany, London, v.110, n.4, p.861-873

DUTRA, L.F.; WENDLING, I.; BRONDANI, G.E. 2009. A micropropagação de eucalipto. Pesquisa Florestal Brasileira, Colombo, n.58, p.49-59

FAVALESSA, C.M.C.; UBIALLI, J.A.; CALDEIRA, S.F.; DRESCHER, R.; ACOSTA, F.C. 2012. Equações de sortimentos para Tectona grandis na região centro-sul de Mato Grosso. Pesquisa Florestal Brasileira, Colombo, v.32, n.72, p.389-399

FERNANDES, D.A.; SOUZA, R.S.; COSTA, R.B. 2011. Cultivo in vitro de teca (Tectona grandis L.f.): uma revisão. Revista de Agricultura, Piracicaba, v.86, n.1, p.32-46

FERREIRA, D.F. 2000. Análise estatística por meio do SISVAR (Sistema para Análise de Variância) para Windows versão 4.0. In: REUNIÃO ANUAL DA REGIÃO BRASILEIRA DA SOCIEDADE INTERNACIONAL DE BIOMETRIA, 45., 2000, São Carlos. Anais... São Carlos: UFSCar, p.255-258

GANGOPADHYAY, G.; GANGOPADHYAY, S.B.; PODDAR, R.; GUPTA, S.; MUKHERJEE, K.K. 2003. Micropropagation of Tectona grandis: assessment of genetic fidelity. Biologia Plantarum, Praha, v.46, n.3, p.459-461

GEORGE, E.F.; HALL, M.A.; De KLERK, G.J. 2008. Plant propagation by tissue culture. 3rd ed. Netherlands: Springer, v.1. 501p.

GIRI, C.C.; SHYAMKUMAR, B.; ANJANEYULU, C. 2004. Progress in tissue culture, genetic transformation and applications of biotechnology to trees: an overview. Trees, Berlin, v.18, n.2, p.115-135

GREENWAY, M.B.; PHILLIPS, I.C.; LLOYD, M.N.; HUBSTENBERGER, J.F.; PHILLIPS, G.C. 2012. A nutrient medium for diverse applications and tissue growth of plant species in vitro. In Vitro Cellular & Developmental Biology - Plant, Columbia, v.48, n.4, p.403-410

GROUT, B.W.W. 1988. Photosynthesis of regenerated plantlets in vitro, and stress of transplanting. Acta Horticulturae, The Hagu, n.230, p.129-135

GUIMARÃES, P.T.C.; PASQUAL, M.; MIRANDA, A.M.P. 1999. Efeito de diferentes concentrações de nitrogênio e de sacarose sobre a propagação in vitro de samambaia-espada [Nepholepis exaltata (L.) Schott]. Ciência e Agrotecnologia, Lavras, v.23, n.2, p.309-316

GYVES, E.M.; ROYANI, J.I.; RUGINI, E. 2007. Efficient method of micropropagation and in vitro rooting of teak (Tectona grandis L.) focusing on large-scale industrial plantations. Annals of Forest Science, Les Ulis, v.64, n.1, p.73-78

HARTMANN, H.T.; KESTER, D.E.; DAVIES JR, F.T.; GENEVE, R.L. 2011. Plant propagation: principles and practices. 8th ed. São Paulo: Prentice-Hall, 915p.

HUSEN, A.; PAL, M. 2007. Effect of branch position and auxin treatment on clonal propagation of Tectona grandis L.f. New Forests, Dordrecht, v.34, n.3, p.223-233

HUSEN, A.; PAL, M. 2006. Variation in shoot anatomy and rooting behaviour of stem cuttings in relation to age of donor plants in teak (Tectona grandis Linn. f.). New Forests, Dordrecht, v.31, n.1, p.57-73

INOUE, M.T.; GRAÇA, M.E.C.; CORREA, G. 1998. Capacidade fotossintética de plântulas micropropagadas e de mudas de Eucalyptus tereticornis SM. Boletim de Pesquisa Florestal, Colombo, n.36, p.71-77

KANECHI, M.; OCHI, M. 1998. The effects of carbon dioxide enrichment, natural ventilation, and light intensity on growth, photosynthesis, and transpiration of cauliflower plantlets cultured in vitro photoautotrophically and photomixotrophically. Journal of the American Society for Horticultural Science, Mount Vernon, v.123, n.2, p.176-181

KEPCZYNSKI, J.; NEMOYKINA, A.; KEPCZYŃSKA, E. 2006. Ethylene and in vitro rooting of rose shoots. Plant Growth Regulation, Dordrecht, v.50, n.1, p.23-28

KEVERS, C.; FRANCK, T.; STRASSER, R.J.; DOMMES, J.; GASPAR, T. 2004. Hyperhydricity of micropropagated shoots: a typically stress-induced change of physiological state. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, Dordrecht, v.77, n.2, p.181-191

KHANDURI, V.P.; LALNUNDANGA; VANLALREMKIMI, J. 2008. Growing stock variation in different teak (Tectona grandis) forest stands of Mizoram, India. Journal of Forestry Research, Beijing, v.19, n.3, p.204-208

KOK, R. 2009. Tectona grandis (teak). Kew: royal botanic gardens

KOZGAR, M.I.; SHAHZAD, A. 2012. An improved protocol for micropropagation of teak tree (Tectona grandis L.). Rendiconti Lincei, Milano, v.23, n.2, p.195-202

KUMAR, P.P.; RAO, C.D.; GOH, C.J. 1996. Ethylene and CO2 affect direct shoot regeneration from the petiolar ends of Paulownia kawakamii leaves cultured in vitro. Plant Growth Regulation, Dordrecht, v.20, n.3, p.237-243

MACEDO, R.L.G.; GOMES, J.E.; VENTURIN, N.; SALGADO, B.G. 2005. Desenvolvimento inicial de Tectona grandis L. F. (Teca) em diferentes espaçamentos no município de Paracatu, MG. Cerne, Lavras, v.11, n.1, p.61-69

MAJADA, J.P.; FAL, M.A.; SÃNCHEZ-TAMÉS, R. 1997. The effect of ventilation rate on proliferation and hyperhydricity of Dianthus caryophyllus L. In Vitro Cellular & Developmental Biology - Plant, Columbia, v.33, n.1, p.62-69

MERKLE, S.A.; NAIRN, C.J. 2005. Hardwood tree biotechnology. In Vitro Cellular & Developmental Biology - Plant, Columbia, v.41, n.5, p.602-619

MUHAMMAD, A.; FAHEEM, A. 2012. Effect of auxins on axillary and denovo shoot regeneration from in vitro shoot cultures derived from forced epicormic buds of teak (Tectona grandis L.). Forestry Studies in China, Beijing, v.14, n.3, p.180-186

MURASHIGE, T.; SKOOG, F. 1962. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures. Physiologia Plantarum, Copenhagen, v.15, p.473-497

NAGAO, E.O.; PASQUAL, M.; RAMOS, J.D. 1994. Efeitos da sacarose e do nitrogênio inorgânico sobre a multiplicação in vitro de brotações de porta-enxerto de citros. Bragantia, Campinas, v.53, n.1, p.25-31

NEHRA, N.S.; BECWAR, M.R.; ROTTMANN, W.H.; PEARSON, L.; CHOWDHURY, K.; CHANG, S.; WILDE, H.D.; KODRZYCKI, R.J.; ZHANG, C.; GAUSE, K.C.; PARKS, D.W.; HINCHEE, M.A. 2005. Forest biotechnology: innovative methods, emerging opportunities. In Vitro Cellular and Developmental Biology - Plant, Columbia, v.41, n.6, p.701-717

NEPOMUCENO, C.F.; RIOS, A.P.S.; QUEIROZ, S.R.O.D.; PELACANI, C.R; SANTANA, J.R.F. 2009. Respostas morfofisiológicas in vitro de plântulas de Anadenanthera colubrina (Vell.) Brenan var. cebil (Griseb) Altschul. Revista Ãrvore, Viçosa, v.33 n.3, p.481-490

OGURA-TSUJITA, Y.; OKUBO, H. 2006. Effects of low nitrogen medium on endogenous changes in ethylene, auxins, and cytokinins in in vitro shoot formation from rhizomes of Cymbidium kanran. In Vitro Cellular & Developmental Biology - Plant, Columbia, v.42, n.6, p.614-616

PANDEY, D.; BROWN, C. 2000. Teak: a global overview. Unasylva, Roma, v.51, n.2, p.3-12

RIBEIRO, M.V; LIMA, C.S.M; BANDEIRA, J.M.; RUBIN, S.; BENITEZ, L.C.; PETERS, J.A.; BRAGA, E.J.B. 2007. Concentrações de Sacarose e tipos de vedação no cultivo in vitro de Melissa officinalis L. Revista Brasileira de Biociências, Porto Alegre, v.5, supl.2, p.843-845

RODRIGUES, M.M.; MELO, M.D.; ALOUFA, M.A.I. 2006. Propagação vegetativa in vitro e análise estrutural de macieira. Pesquisa Agropecuária Brasileira, Brasília, v.41, n.1, p.171-173

ROSSETTO, M.; DIXON, K.W.; BUNN, E. 1992. Aeration: a simple method to control vitrification and improve in vitro culture of rare australian plants. In Vitro Cellular & Developmental Biology - Plant, Columbia, v.28, n.4, p.192-196

SHIRIN, F.; RANA, P.K.; MANDAL, A.K. 2005. In vitro clonal propagation of mature Tectona grandis through axillary bud proliferation. Journal of Forest Research, Tokyo, v.10, n.6, p.465-469

SHUKLA, S.R.; RAO, R.V.; SHASHIKALA, S.; KUMAR, P.; SHARMA, S.K. 2011. Wood quality variation in Tectona grandis (teak) clones from CSO raised at Maredumilli (Rajahmundry), Andhra Pradesh. Journal of the Indian Academy of Wood Science, Bangalore, v.8, n.2, p.116-119

SINGH, S.; BHANDARI, A.S.; ANSARI, S.A. 2006. Stockplant management for optimized rhizogenesis in Tectona grandis stem cuttings. New Forests, Dordrecht, v.31, n.1, p.91-96

TAIZ, L.; ZEIGER, E. 2009. Fisiologia vegetal. 4a ed. Porto Alegre: Artmed, 848 p.

THORPE, T.A. 2007. History of plant tissue culture. Molecular Biotechnology, Totowa, v.37, n.2, p.169-180

WOJTANIA, A.; WĘGRZYNOWICZ-LESIAK, E. 2012. Ethylene and cytokinin interaction in the morphogenesis of Pelargonium × hortorum L.H. Bailey in vitro. Acta Physiologiae Plantarum, Poznan, v.34, n.6, p.2407-2412

YASEEN, M.; AHMAD, T.; SABLOK, G.; STANDARDI, A.; HAFIZ, I.A. 2013. Review: role of carbon sources for in vitro plant growth and development. Molecular Biology Reports, Dordrecht, v.40, n.4, p.2837-2849

Published

2013-12-18

Issue

Section

Artigos